試劑

0.2 mol/ L磷酸鹽緩沖液?
Na₂HPO₄·2H₂O? 35.61 g 或Na₂HPO₄·7H₂O 53.65 g / Na₂HPO₄·12H₂O 71.64 g
NaH₂PO₂·H₂O? 27.60 g 或NaH₂PO₄·2H₂O? 31.21 g
加雙蒸水（ddH2O）到1000 mL
0.1 mol/ L磷酸鹽緩沖液（PBS）?
0.2 mol/ L磷酸鹽緩沖液? 250 mL
加雙蒸水到500 mL
2 % 低溫瓊脂?
低溫瓊脂? 1.0 g
加雙蒸水到 50 mL
加熱到沸騰，溶液均勻后備用
1 % 戊二醛固定液?
25 %（m/v）戊二醛水溶液? 2 mL
0.2 mol/ L磷酸鹽緩沖液? 25 mL
加雙蒸水到50 mL
1 % 鋨酸固定液?
2 %（m/v）鋨酸水溶液?? 10 mL
0.2 mol/ L磷酸鹽緩沖液? 10 mL
包埋劑A液?
Epon 812 樹脂? 50 mL
十二烷基琥珀酸酐（modecenyl succinic anhydride, DDSA）? 80 mL
包埋劑B液?
Epon 812 樹脂? 50 mL
六甲酸酐（methyl nadic anhydride, MNA）? 44.5 mL
2，4，6 –?三甲氨基甲基苯酚（2, 4, 6 – tridimethylamino methyl phenol, DMP-30）?
甲苯胺藍染液?
甲苯胺藍? 1 g
1 mol/ L NaOH? 10 mL
加雙蒸水到50 mL
混勻過濾后使用
1 % 醋酸雙氧鈾染液
醋酸雙氧鈾? 0.2 g
加雙蒸水到10 mL
封口膜封口，4℃避光保存
1 % 檸檬酸鉛染液?
硝酸鉛? 0.265 g
檸檬酸鈉（含2分子結晶水）? 0.352 g
加雙蒸水到10 mL①
① 配制鉛染液時，要先加水6 mL，超聲震蕩30 min，使乳白色檸檬酸鉛懸液充分混勻。然后滴加1 mol/L NaOH，并不是晃動，直至溶液變清亮。最后定容至10 mL。
② 細胞樣品處理和藻類及其他游離樣品處理流程可相互參照，即細胞樣品可以酌情使用瓊脂鑄模法取材固定，藻類及其他游離樣品也可以使用血清預包埋法取材固定，總體視樣品密度及其對于溫度的耐受等條件而定。
封口膜封口，4℃保存

儀器

修塊機 Leica EM TRIM
切片機 Leica EM UC6
光學顯微鏡 Nikon 80i 及配套拍照系統(tǒng)DS-L1
透射電子顯微鏡 JEOL-1230
Gatan Bioscan Camera 792

實驗流程

一、 取材與固定
A. 植物樣品
1. 自來水沖洗表面泥塵后，使用滅菌水清洗2-3次，置于鋪有預濕濾紙的培養(yǎng)皿中。
2. 使用干凈鋒利的刀片切取目標材料，所取材料體積不大于3 mm3。
切取樣品時應注意動作迅速、減小損傷，避免來回切拉；使用的滅菌水及器具應4℃預冷，并在操作中盡量保持低溫以降低組織細胞活性。
3. 將切下材料放入裝有預冷的戊二醛固定液的青霉素小瓶中后抽氣，抽幾次后輕搖小瓶，并打開瓶蓋。重復2-3次，直到樣品沉入瓶底。
4. 室溫靜置1h，或搖床輕搖1h。
5. PBS清洗3次，10min/次。
6. 1%鋨酸固定液固定1h。
7. PBS清洗3次，10min/次。

B. 動物樣品
1. 4℃預冷生理鹽水沖洗組織塊，迅速切取組織塊，體積不大于3 mm3
2. 將切取的組織塊投入裝有預冷戊二醛固定液的青霉素小瓶中，并抽氣直至樣品沉底。
3. 室溫靜置1h，或搖床輕搖1h。
4. PBS清洗3次，10 min/次。
5. 1%鋨酸固定液固定1 h。
6. PBS清洗3次，10 min/次。

C. 單層培養(yǎng)細胞或懸浮培養(yǎng)細胞樣品②
1. 3000 rpm離心5 min，收集細胞樣品，盡量多的吸棄培養(yǎng)液上清。
2. 加入4℃預冷PBS液，充分吹吸混勻，靜置4 min，3000 rpm離心5 min，吸棄上清。
① 配制鉛染液時，要先加水6 mL，超聲震蕩30 min，使乳白色檸檬酸鉛懸液充分混勻。然后滴加1 mol/L NaOH，并不是晃動，直至溶液變清亮。最后定容至10 mL。
② 細胞樣品處理和藻類及其他游離樣品處理流程可相互參照，即細胞樣品可以酌情使用瓊脂鑄模法取材固定，藻類及其他游離樣品也可以使用血清預包埋法取材固定，總體視樣品密度及其對于溫度的耐受等條件而定。
3. 重復步驟2一次。
4. 加入預冷的血清或蛋清，充分吹吸混勻，3000 rpm離心10 min，吸棄大部分上清，留少部分，吹吸懸浮沉淀細胞。（或離心后吸棄上清，留少部分上清，不懸浮沉淀細胞，視樣品濃度而定）
5. 緩慢加入戊二醛固定液，小心放入4℃冰箱，固定過夜。
6. 吸棄上清，刀片小心劃開離心管壁，用鉗子拉開離心管，小心取出已凝成固體的血清包埋塊。
7. 使用干凈的單面刀片或手術刀，將血清包埋塊切成2 mm3左右的小塊，取3-5個富集細胞樣品效果較好的包埋小塊繼續(xù)下面實驗。
8. PBS清洗3次，10 min/次。
9. 1%鋨酸固定液固定1 h。
10. PBS清洗3次，10 min/次。

D. 藻類及其他游離培養(yǎng)樣品
1. 吸取2%低溫瓊脂液200μL到0.2mL離心管，并將離線管置于冰上，取10μL槍頭迅速插入瓊脂中并保持離心管豎直，且槍頭豎直靠中的包裹在瓊脂中。
2. 靜置1 min，待瓊脂凝固后，小心拔出槍頭，形成瓊脂空腔，待用。
3. 3000 rpm離心5 min，收集樣品，盡量多的吸棄培養(yǎng)液上清。
4. 加入4℃預冷PBS液，充分吹吸混勻，靜置4min，3000 rpm離心5min，吸棄上清。
5. 重復步驟2清洗，吸棄大部分上清，留極少部分上清液，吹吸懸浮樣品。
6. 使用10μL 移液器小心將樣品加入已經制備好的瓊脂空腔中，使樣品充滿空腔大部分，添加過程中盡量避免氣泡出現。
7. 吸取50μL溶化的瓊脂，快速滴加到空腔瓊脂上封口，冰浴5 min，待瓊脂完全凝固。
8. 使用單面刀片小心劃開離心管壁，用鉗子拉開離心管，小心取出已凝成固體的瓊脂包埋塊，稍作修葺。
9. PBS清洗3次，10 min/次。
10. 1%鋨酸固定液固定1 h。
11. PBS清洗3次，10 min/次。

二、 脫水

1. 按丙酮與滅菌水體積比3：7配制30%脫水劑。吸棄樣品管/瓶中的PBS，快速加入現配的脫水劑（脫水換液過程禁止出現樣品暴露空氣中現象，可不全部吸完，略有剩余，使樣品浸潤；動作應迅速準確），室溫放置或搖床輕搖45 min。加入按30%、50%、70%、90%、100%（v/v）的濃度梯度進行脫水。
2. 配制50%脫水劑，快速換液，室溫輕搖45 min。
3. 配制70%脫水劑，快速換液，室溫輕搖45 min。
4. 配制90%脫水劑，快速換液，室溫輕搖45 min。
5. 使用純丙酮快速換液，室溫輕搖30 min③。
6. 重復步驟5一次。

三、 滲透包埋

在此步脫水操作完成后即可開始配制滲透用包埋劑，以免安排不周。樣品浸泡在純丙酮中時間不宜過久，以免造成樣品較脆，不利于超薄切片。

1. 配制滲透用樹脂包埋劑
1) 取干凈的10 mL注射器，拔去活塞，用封閉針頭堵住注射口，放于通風櫥中。
2) 小心傾倒B液9 mL到注射器中；然后再小心傾倒A液1 mL。
3) 插入活塞，堵住注射器后，顛倒搖勻至液體顏色均勻，無絲狀液體。
4) 小心拔去活塞，通風櫥中操作，緩慢滴加14滴DMP-30。
5) 插入活塞，堵住注射器后，顛倒搖勻至液體顏色完全均勻，無絲絮狀分色，豎直放置待用。
2. 按照包埋劑與丙酮體積比3：7配制30%滲透劑，快速吸棄樣品管中純丙酮并加入滲透劑，輕搖滲透3 h。
3. 按照包埋劑與丙酮體積比7：3配制70%滲透劑，快速換液，輕搖滲透過夜。
4. 重新配制包埋劑，并小心推按注射器，將包埋劑擠到包埋模具中至液面略凸。
5. 解剖針挑取樣品到純包埋劑中，滲透3 h。
6. 小心挑取樣品，濾紙上稍微沾下吸棄部分粘附的包埋劑，輕輕放置到未滲透過樣品的包埋孔中，小心將樣品按到底，擺放好位置。記錄各樣品對應包埋塊編號。
7. 梯度溫度聚合包埋
1) 37℃烘箱中12 h，期間定時觀察樣品有無漂移現象，如有，則再次小心擺放樣品位置。
2) 45℃烘箱中12 h。
3) 60℃烘箱中24 h。

四、 修塊與切片

1. 拿到包埋塊后檢查樣品位置是否得當，選取位置好的包埋塊優(yōu)先進行修塊、切片。
2. 粗修包埋塊
1) 使用六角扳手將包埋塊固定在樣品頭上，露出長度合適。
2) 將樣品頭固定在修塊機上，體視鏡觀察修塊，分四個方向將包埋塊頭部多余的包埋劑修去，暴露出組織塊。
3) 使用鋒利的單面刀片修去組織塊周圍毛刺的包埋劑，使其四邊光滑清晰。
4) 卸下樣品頭裝至切片機上，使用玻璃刀修片，直至樣品表面光滑清晰。
3. 半薄切片
1) 將粘有水槽的玻璃刀裝至切片機刀臺上，體視鏡下小心對刀，不時轉動手輪，使樣品上下移動，調整刀臺左右角度及樣品上下角度，直至包埋塊整個表面與刀刃的距離相等。
2) 轉動手輪，使整個樣品高于刀刃，點控制面板Start，設置切片區(qū)域上邊界；轉動手輪，使整個樣品低于刀刃，點控制面板End，設置切片區(qū)域下邊界。
3) 手動步進刀臺靠近樣品，至出現彩色干涉光，繼續(xù)步進刀臺，并通過體視鏡觀察干涉光譜變化，直至干涉光消失。
4) 轉動手輪，使樣品離開刀刃區(qū)域，使用滴管將干凈的去離子水加到玻璃刀水槽中，體視鏡觀察直至液面略低于刀刃。
5) 調整切片厚度與速度，按控制面板Run/Stop鍵，開始切片。體視鏡觀察可見900nm厚度切片反光為亮綠色。
6) 待有切片下來形成4-6片的切片帶，按Run/Stop鍵停止切片，體視鏡觀察下，使用睫毛筆將所需薄片撥離刀刃，并將所需切片聚攏一起。
7) 用干凈撈片環(huán)輕輕沾取切片所在區(qū)域，根據水膜表面張力撈取切片，放到干凈載玻片上，酒精燈略微加熱，使水蒸干，并對著光亮用記號筆標示切片所在位置。
4. 半薄切片染色
1) 吸取20μL甲苯胺藍染液，滴加到載玻片放有切片的位置，室溫靜置30 s 。
2) 去離子水沖洗玻片，直至不再有藍色。吸水紙上瀝干，酒精燈略微加熱，加速切片上的水分蒸發(fā)。
3) 顯微鏡觀察切片質量和樣品位置。
5. 精修包埋塊
1) 移去裝有水槽的玻璃刀，取下裝有包埋塊的樣品頭，裝至修塊機上。
2) 根據半薄切片結果，使用新的鋒利刀口，小心修理包埋塊四邊，使其盡可能的光滑、平整。
6. 超薄切片
1) 將鉆石刀裝至切片機刀臺上，體視鏡下小心對刀，不時轉動手輪，使樣品上下移動，調整刀臺左右角度及樣品上下角度，直至包埋塊整個表面與刀刃的距離相等。
2) 轉動手輪，使整個樣品高于刀刃，點控制面板Start，設置切片區(qū)域上邊界；轉動手輪，使整個樣品低于刀刃，點控制面板End，設置切片區(qū)域下邊界。
3) 手動步進刀臺靠近樣品，至出現彩色干涉光，轉動手輪，使樣品上下移動，調整刀臺左右角度及樣品上下角度，直至包埋塊整個表面與刀刃的干涉光譜顏色一致；繼續(xù)步進刀臺，并通過體視鏡觀察干涉光譜變化，直至干涉光消失。
4) 轉動手輪，使樣品離開刀刃區(qū)域，使用滴管將干凈的去離子水加到玻璃刀水槽中，體視鏡觀察直至液面略低于刀刃。
5) 調整切片厚度與速度，按控制面板Run/Stop鍵，開始切片。體視鏡觀察可見70nm厚度切片反光為亮灰色及淺灰色。
6) 待有切片下來形成10-20片的切片帶，按Run/Stop鍵停止切片，體視鏡觀察下，使用睫毛筆將所需薄片撥離刀刃，并將所需切片聚攏一起。
7) 用干凈撈片環(huán)輕輕沾取切片所在區(qū)域，根據水膜表面張力撈取切片，輕輕放到干凈載膜銅網上，用尖角濾紙靠近銅網邊緣緩慢吸干水分。
8) 輕輕移去撈片環(huán)，將載有切片的銅網放到鋪有濾紙的平皿中，晾干待染色觀察。

五、 染色

1. 醋酸雙氧鈾染色
1) 按每片載網20μL染液的量吸取醋酸雙氧鈾染液，13 200 rpm離心5 min。
2) 將放有切片的載網小心放到染色盤上，有切片面靠上，并稍微用鑷子按載網邊緣，使其與染色盤接觸粘附牢固。
3) 吸取20μL染液滴加到載網上面，蓋上平皿防塵，室溫染色30 min。
4) 將染色盤整個放到裝有去離子水的清洗缸中，輕搖清洗1 min。
5) 小心取出染色盤，更換水洗液，輕搖清洗5min。
6) 重復清洗2次。
2. 檸檬酸鉛染色
1) 按每片載網20μL染液的量吸取醋酸雙氧鈾染液，13 200 rpm離心5 min。④
2) 在放置染色盤的平皿中放入2片固體NaOH，用以吸收平皿中CO2氣體。
3) 吸取20μL染液滴加到載網上面，蓋上平皿防塵，室溫染色8 min。
4) 將染色盤整個放到裝有去離子水的清洗缸中，輕搖清洗1 min。
5) 小心取出染色盤，更換水洗液，輕搖清洗5min。
連續(xù)染色時，載網不需要從染色盤上拿下，清洗后直接進行鉛染即可，但是鉛染液要現用現取。
6) 重復清洗2次。
7) 小心夾取載網，放置到鋪有濾紙的干凈平皿中，晾干待電鏡觀察。

六、 電鏡觀察

1. 取出樣品桿，打開樣品夾，小心放入載網，合上樣品夾，并轉動樣品桿，輕敲確保樣品夾已準確固定載網。
2. 將樣品桿插入透射電鏡樣品室，開始抽氣。
3. 打開燈絲開關，等待檢測電流出現后，打開觀察窗開始觀察。
4. 先在低倍下找到切片，再高倍觀察切片，尋找待看目標，仔細對焦。
5. 將切片目標區(qū)域遇到觀察窗中間后，調整燈絲電流密度為3.8 pA/cm2。
6. 插入拍照CCD，Start View，微調焦距，Start Acquire 拍照。
7. 拍照完畢，按格式需求保存照片到指定文件夾。
8. 使用專用寫保護閃存盤拷貝數據到公共電腦觀察、使用。